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原料药杂质分析中如何应对分析方法转移过程中的系统适用性问题

三方检测单位 2023-01-18

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原料药杂质分析是保障药品质量的核心环节,而分析方法转移则是实现不同实验室(如研发与生产、申报与检验)结果一致性的关键步骤。系统适用性试验作为方法有效性的“前置验证”,直接决定杂质检测的准确性与可靠性——若转移过程中系统适用性不达标,不仅会延误项目进度,更可能引发质量风险。本文聚焦方法转移中的系统适用性问题,结合杂质分析的特点,从风险预控、仪器适配、试剂管控等维度,拆解具体应对策略。

系统适用性在杂质分析中的核心定位

系统适用性试验并非“形式化流程”,而是模拟杂质分析的真实场景,验证整个分析系统(仪器、试剂、方法、人员)能否满足检测要求。对于杂质分析而言,系统适用性的关键指标包括分离度(杂质与主峰、杂质之间的分离)、灵敏度(检测限与定量限)、重复性(峰面积或峰高的RSD)、拖尾因子(确保峰形对称)等——这些指标直接关联杂质的准确定量与定性。例如,若分离度不足,可能导致杂质峰与主峰重叠,误判杂质含量;若灵敏度不够,则无法检出低限度的有害杂质。

在方法转移场景中,系统适用性的“失败”往往不是单一因素导致的,而是接收实验室的系统与原方法的“适配性”不足。比如原实验室使用的色谱柱批次不同,或流动相配制的pH值微小差异,都可能引发分离度下降。因此,理解系统适用性的“核心逻辑”——即“系统能否重现原方法的分离效果与检测能力”,是应对问题的第一步。

需要强调的是,杂质分析的系统适用性要求更严格:由于杂质通常含量极低(如基因毒性杂质可能要求ppm级检测),系统的微小波动都会被放大。例如,某API的基因毒性杂质A检测中,原实验室的系统适用性要求分离度≥2.0,而接收实验室因色谱柱柱效下降,分离度仅1.8,直接导致杂质A无法准确定量——这也是为什么杂质分析的系统适用性试验需“精准到每一个细节”。

转移前的“预评估”:基线调查与风险识别

方法转移不是“直接照搬”,而是“有准备的复制”。在转移前,发起实验室与接收实验室需共同完成“基线调查”:包括梳理原方法的系统适用性关键参数(如色谱柱型号/批次、流动相组成/pH、柱温、流速、检测波长)、原实验室的历史系统适用性数据(如近6个月的分离度、RSD变化趋势)、接收实验室的仪器配置(如液相色谱仪的泵类型、检测器灵敏度、柱温箱精度)等。

风险识别的核心是“找出可能导致系统适用性失败的变量”。例如,若接收实验室使用的液相色谱仪泵是单柱塞泵(原实验室是双柱塞泵),则可能因流量波动导致峰形拖尾;若接收实验室的柱温箱精度是±1℃(原实验室是±0.5℃),则可能影响保留时间的重复性。这些变量需提前列出,并评估其对系统适用性的影响程度。

举个实际案例:某原料药的有关物质分析方法转移中,原实验室使用的是“C18色谱柱(5μm,4.6×250mm)”,而接收实验室只有“C18色谱柱(3.5μm,4.6×150mm)”——柱长与粒径的差异会直接影响分离度与柱压。此时,预评估阶段就需判断:短柱能否通过调整流速、柱温来达到原柱的分离效果?若无法达到,则需提前采购原型号色谱柱,避免转移中出现系统适用性问题。

此外,预评估还需包括“人员能力”的考察:接收实验室的分析人员是否熟悉原方法的操作细节(如流动相的脱气时间、进样体积的精度)?是否了解杂质的化学性质(如易降解杂质的处理方式)?这些“人为因素”也是系统适用性失败的常见原因——例如,某分析人员未充分脱气流动相,导致基线噪音增大,灵敏度达不到要求。

仪器差异的“适配性”调整:从硬件到软件的对齐

仪器是系统适用性的“硬件基础”,不同品牌、型号的仪器在硬件性能上的差异,是转移中最常见的系统适用性问题来源。例如,原实验室使用的是Agilent 1290液相色谱仪(高分辨检测器),而接收实验室使用的是Waters e2695(常规检测器),则检测器的灵敏度差异可能导致检测限无法满足要求。

应对仪器差异的关键是“适配性调整”,而非“强制替换”。具体策略包括:

(1)硬件参数的对齐:如柱温箱温度、流速范围、进样体积精度等,需调整至与原实验室一致。

(2)软件设置的匹配:如积分参数(峰宽、斜率、阈值),原实验室可能使用“自动积分”,而接收实验室需确认积分参数是否相同——若积分参数不同,可能导致峰面积计算差异,影响重复性。

(3)检测器的校准:如紫外检测器的波长精度,需通过标准物质(如萘的甲醇溶液)验证,确保波长误差在±1nm以内,否则会影响杂质的响应值。

举个例子:某原料药的杂质B分析中,原实验室使用的是荧光检测器,激发波长280nm,发射波长340nm;接收实验室的荧光检测器因未校准,实际激发波长偏移至285nm,导致杂质B的响应值下降30%,系统适用性中的“信噪比”(要求≥10)仅为7。此时,通过校准检测器波长至280nm,信噪比恢复至15,系统适用性达标。

此外,对于色谱柱的差异,可通过“柱效测试”验证:使用标准物质(如苯、萘的混合物)测试接收实验室色谱柱的理论塔板数,若理论塔板数低于原实验室的80%,则需更换色谱柱——因为柱效下降会直接影响分离度。例如,原色谱柱的理论塔板数为10000,接收实验室的色谱柱仅为7000,分离度从2.5降至1.8,此时更换同型号色谱柱即可解决问题。

试剂与对照品的“同源性”管控:避免引入隐性变量

试剂与对照品是系统适用性的“化学基础”,其纯度、组成的差异,可能引入隐性变量,导致系统适用性失败。例如,流动相中使用的乙腈,若接收实验室使用的是“分析纯”(纯度99.5%),而原实验室使用的是“色谱纯”(纯度99.9%),则乙腈中的杂质可能导致基线噪音增大,影响灵敏度。

“同源性”管控的核心是“尽量使用与原实验室一致的试剂与对照品”。具体要求包括:

(1)试剂的级别与供应商:如流动相用乙腈需选择同一供应商的色谱纯级别,避免不同供应商的杂质谱差异。

(2)试剂的配制方法:如缓冲盐溶液的pH值,需使用同一品牌的pH计校准,配制后需验证pH值(误差≤±0.05)。

(3)对照品的来源与纯度:杂质对照品需使用原实验室的同一批次,或经标定(通过HPLC、MS等方法确认纯度)后使用——若对照品纯度下降,会导致峰面积计算错误,影响重复性。

实际案例:某原料药的有关物质分析中,原实验室使用的磷酸二氢钾是“Merck”品牌(色谱纯),接收实验室使用的是“国产分析纯”,配制的缓冲盐溶液pH值为6.8(原实验室为6.7),导致主峰保留时间从10min延长至12min,分离度从2.2降至1.7。更换为Merck品牌的磷酸二氢钾后,pH值恢复至6.7,保留时间与分离度均回到原水平,系统适用性达标。

此外,试剂的“新鲜度”也需注意:如流动相中的缓冲盐溶液,若放置时间过长(超过24小时),可能因微生物生长导致基线漂移;若使用过期的试剂(如三乙胺),可能因降解产生杂质,影响峰形。因此,转移过程中需严格控制试剂的保质期与配制时间,避免因试剂问题导致系统适用性失败。

方法参数的“动态验证”:不是照搬而是实证

原方法的参数(如柱温、流速、流动相比例)是基于原实验室的系统优化的,但转移至接收实验室后,可能需要“动态验证”——即通过实验验证这些参数在接收实验室的系统中是否仍然适用,而非直接照搬。

“动态验证”的具体步骤包括:

(1)单因素变量试验:例如,固定其他参数,调整柱温(±2℃),观察分离度与保留时间的变化。

(2)多因素优化试验:若单因素调整无法满足要求,可通过Design of Experiments(DoE)方法,优化柱温、流速、流动相比例的组合,找到接收实验室系统的“最优参数”。

(3)验证参数的“ robustness”:即参数在小范围内波动时,系统适用性仍能达标——例如,柱温在25±1℃范围内,分离度均≥2.0,说明该参数具有 robustness。

例如,某原料药的杂质C分析中,原方法的柱温是30℃,接收实验室的柱温箱设置为30℃,但实际温度为32℃(因柱温箱校准误差),导致保留时间缩短,分离度从2.1降至1.8。通过调整柱温至28℃(实际温度30℃),分离度恢复至2.2,系统适用性达标。

需要注意的是,“动态验证”不是“修改方法”,而是“调整参数以适配接收实验室的系统”——调整后的参数需在原方法的“耐用性范围”内(即原方法开发时已验证的参数波动范围)。例如,原方法的柱温耐用性范围是25-35℃,则接收实验室调整柱温至28℃是允许的;若超出耐用性范围(如调整至20℃),则需重新进行方法验证,确保方法的有效性。

系统适用性失败的“根因分析”:从现象到本质的拆解

即使做了充分的预评估与调整,转移过程中仍可能出现系统适用性失败的情况。此时,关键是“根因分析”——从现象出发,逐步拆解可能的原因,而非“盲目调整参数”。

根因分析的步骤可遵循“5W1H”原则:

(1)What(现象):明确系统适用性失败的具体指标(如分离度不足、重复性差、灵敏度不够)。

(2)When(时间):是首次试验失败,还是多次试验中的偶尔失败?(3)Where(位置):是某台仪器失败,还是所有仪器都失败?(4)Who(人员):是某一分析人员操作失败,还是所有人员都失败?(5)Why(原因):结合前面的信息,推测可能的原因(如仪器未校准、试剂不纯、操作错误)。

(6)How(验证):通过实验验证推测的原因是否正确。

实际案例:某原料药的有关物质分析中,接收实验室的系统适用性试验中,重复性(峰面积RSD)为6.5%(要求≤2.0%)。通过“5W1H”分析:

(1)现象:重复性差。

(2)时间:所有试验都失败。

(3)位置:所有仪器都失败。

(4)人员:所有分析人员都失败。

(5)推测原因:对照品溶液不稳定。

(6)验证:将对照品溶液冷藏(4℃)24小时后重新进样,RSD降至1.8%——原因为对照品溶液中的杂质C易降解,常温放置导致浓度变化。

另一个案例:分离度不足(1.5,要求≥2.0)。分析:

(1)现象:分离度不足。

(2)时间:首次试验失败。

(3)位置:某台仪器失败。

(4)人员:某分析人员操作。

(5)推测原因:色谱柱安装错误。

(6)验证:检查色谱柱方向(入口与出口颠倒),重新安装后分离度恢复至2.3——原因为色谱柱方向错误导致流动相流速不均,分离效果下降。

跨实验室的“协同校准”:建立共同的判定标准

系统适用性的“判定标准”是跨实验室一致的关键——若原实验室与接收实验室对“分离度≥2.0”的理解不同(如原实验室以峰谷比≥0.5为分离度计算依据,接收实验室以基线分离为依据),则可能导致判定结果差异。

“协同校准”的核心是“建立共同的判定标准”,具体包括:

(1)定义关键术语:如分离度的计算方法(按USP <621>的规定,分离度R=2(t2-t1)/(W1+W2))、拖尾因子的计算方法(T=W0.05h/(2d1))。

(2)共享系统适用性的“参考图谱”:原实验室需提供系统适用性合格的色谱图,接收实验室需以此为参考,确保自己的色谱图与参考图谱一致(如保留时间偏差≤±5%,峰形相似)。

(3)共同进行“比对试验”:使用同一批试剂、对照品、仪器,在两个实验室同时进行系统适用性试验,验证结果的一致性——若结果一致,则判定标准统一;若不一致,则需调整判定标准或方法参数。

例如,某原料药的杂质D分析中,原实验室的分离度计算以“峰谷比≥0.5”为依据,而接收实验室以“基线分离”(峰谷低于基线噪音)为依据,导致原实验室判定分离度合格(2.0),接收实验室判定不合格(1.8)。通过协同校准,统一使用USP <621>的分离度计算方法后,双方的判定结果一致。

此外,跨实验室的“协同校准”还需包括“操作流程”的统一:如进样顺序(空白、对照品、供试品)、进样次数(对照品进样6次计算重复性)、数据处理方法(积分参数、结果计算)等。例如,原实验室的进样顺序是“空白→对照品×6→供试品×2”,接收实验室若改为“对照品×6→空白→供试品×2”,可能因空白进样位置不同导致基线干扰,影响系统适用性。

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